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1.1
藍靛果
[Lonicera edulis Turcz.]別名藍靛果忍冬、藍果忍冬、藍果,俗稱山茄子、羊奶子、黑瞎子果,為忍冬科忍冬屬多年生落葉小灌木,果實為藍色小漿果,具有很高的食用與保健價值。
1.2
植物組織培養(yǎng)
在無菌條件下,將離體的植物器官、組織、細胞或原生質(zhì)體等,培養(yǎng)在人工培養(yǎng)基和人工控制的環(huán)境中,使其再生新植株的過程和技術(shù)。(GB/T 16620)
1.3
外植體
用于植物組織培養(yǎng)的離體植物器官、組織、細胞以及原生質(zhì)體等。
1.4
培養(yǎng)基
根據(jù)植物營養(yǎng)原理與植物組織培養(yǎng)的要求人工配制的營養(yǎng)基質(zhì)。
1.5
培養(yǎng)基母液
按試劑種類和性質(zhì)分別配制的高于培養(yǎng)基配方濃度的溶液。
1.6
植物生長物質(zhì)
調(diào)節(jié)植物生長發(fā)育的物質(zhì),包括植物激素和植物生長調(diào)節(jié)劑。常用的植物生長物質(zhì)有生長素類似物IBA(吲哚丁酸)、6-BA(6-芐氨基腺嘌呤)、NAA(萘乙酸)、KT(激動素)等。
1.7
外植體滅菌
將外植體表面的微生物*殺死并盡可能少傷害外植體組織和表層細胞的過程。
1.8
接種
將滅菌后的外植體在無菌條件下接入培養(yǎng)容器內(nèi)的培養(yǎng)基中的過程。
1.9
誘導培養(yǎng)
將滅菌后的外植體接種到誘導愈傷組織等器官培養(yǎng)基中進行培養(yǎng)的過程。
1.10
繼代培養(yǎng)
培養(yǎng)過程中將培養(yǎng)材料周期性地分株、分割等操作后,轉(zhuǎn)接入新鮮培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng)的過程。
1.11
生根培養(yǎng)
將不定芽轉(zhuǎn)移到生根誘導培養(yǎng)基中誘導生根,生成完整植株的過程。
1.12
移栽
組培苗在培養(yǎng)瓶中長出一定數(shù)量的根或根原基后,從瓶中取出移植到基質(zhì)中的過程。
2 實驗設備
2.1
滅菌設備
高壓蒸汽滅菌鍋、紫外燈。
2.2
接種設備
超凈工作臺、槍式鑷子、眼科用解剖剪、*、酒精燈等。
2.3
培養(yǎng)設備
培養(yǎng)容器瓶(罐頭瓶)、培養(yǎng)架、空調(diào)、照明燈管。
2.4
實驗設備
電子天平(0.01mg)、冰箱、pH 5.0~7.0精密試紙、酸度計、溫濕度表、照度計、燒杯、試劑瓶、量筒、容量瓶、移液槍等。
3 環(huán)境設備消毒滅菌
3.1
接種室消毒滅菌
接種前用紫外燈照射30min,每周用*及甲醛混合薰蒸。
3.2
培養(yǎng)室消毒滅菌
每周用*及甲醛混合薰蒸。
3.3
超凈工作臺的消毒滅菌
接種前用紫外燈照射30min,并用70%酒精擦拭臺面,定期清洗超凈工作臺過濾膜。
3.4
接種器具的消毒滅菌
使用前將槍式鑷子、解剖剪、培養(yǎng)皿、*進行高溫蒸汽消毒;接種過程中采用酒精燈灼燒消毒。
4 組培育苗
4.1
培養(yǎng)基制備
4.1.1
母液配制及保存
選用化學純或分析純的化學藥品,根據(jù)MS培養(yǎng)基配方,分別配制大量元素(50倍)、微量元素(100倍)、鐵鹽(200倍)、有機物(100倍)、植物生長調(diào)節(jié)物質(zhì)(0.1~0.5mg/mL)幾種化合物的母液(見附件A.1和附件A.2),將母液保存在4℃的冰箱里。
4.1.2
培養(yǎng)基配制
根據(jù)培養(yǎng)基配方需求,每升培養(yǎng)基中分別加入瓊脂粉(6.5g)、蔗糖(30g)和各類母液,依次溶解于蒸餾水,定容后用0.1mol/L HCl或0.1mol/L lNaOH溶液調(diào)節(jié)pH=5.8,定量分裝至培養(yǎng)瓶中并封口,制備成培養(yǎng)基,備用。培養(yǎng)基配制流程見下圖。
圖
4.2
培養(yǎng)基滅菌
瓶裝培養(yǎng)基在10h內(nèi)完成滅菌,滅菌方式采用高壓蒸汽滅菌,在壓力0.105MPa、溫度121℃條件下滅菌20min~30min。鍋內(nèi)的滅菌物以不超過鍋的容量3/4為宜,高壓滅菌時鍋內(nèi)使用蒸餾水。
4.3
培養(yǎng)基保存
滅菌后的培養(yǎng)基放入接種室,常溫條件下7d內(nèi)使用,2℃~4℃條件下14d內(nèi)使用。培養(yǎng)基應保存于潔凈環(huán)境中,注意避光和防塵。
4.4
外植體接種
4.4.1
外植體的選擇
選擇生長健康、強壯的植株作為采樣母株,剪取母樹下部的半木質(zhì)化的莖段作為外植體,采樣時間宜選擇晴天或露水干后采集。
4.4.2
外植體滅菌
先將外植體用洗滌劑作表面清洗,清除表面的塵土,再將外植體用流水沖洗30min后,將外植體放入消毒瓶中。把裝有外植體的消毒瓶放入超凈工作臺,在超凈工作臺上打開裝有外植體的消毒瓶,倒入70%酒精并搖晃消毒瓶,浸泡消毒10s,倒去酒精,用無菌水沖洗外植體3次~5次;然后用0.1% HgCl2浸泡8min,無菌水沖洗3次~5次,用無菌濾紙吸干外植體表面的水分。
4.4.3
外植體切割
將表面消毒后的外植體切割,接入培養(yǎng)基中。莖在接種前用*刀剪去兩端,長1.0 cm~2.0cm。
4.4.4
外植體接種
操作時,先將培養(yǎng)瓶的封口膜輕輕取下,放在一邊,將培養(yǎng)瓶口在酒精燈外焰上旋轉(zhuǎn)灼燒消毒,殺死瓶口的微生物。將槍式鑷子在酒精燈上灼燒消毒并冷卻后,將外植體接種到培養(yǎng)基中,每個培養(yǎng)瓶放3個外植體,接種后蓋上封口膜,并標注日期。
4.5
組培苗培養(yǎng)條件
培養(yǎng)室的溫度控制在25℃±3℃,相對空氣濕度控制在70%~80%,光照強度為27μmol?m-2?s-1~36μmol?m-2?s-1,光照時間為12h/d。
4.5.1
誘導培養(yǎng)
將外植體接種到誘導培養(yǎng)基中,誘導培養(yǎng)基選用:MS基本培養(yǎng)基+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.2 mg/L,培養(yǎng)20d~25d后進行繼代增殖培養(yǎng)。
4.5.2
繼代增殖培養(yǎng)
外植體經(jīng)誘導培養(yǎng)生成愈傷組織或叢生芽,轉(zhuǎn)接至增殖培養(yǎng)基中繼代培養(yǎng),繼代增殖培養(yǎng)基可選用:MS基本培養(yǎng)基+6-BA 0.5mg/L+IBA 0.3mg/L+KT 1.0 mg/L,培養(yǎng)30-35d。
4.5.3
生根培養(yǎng)
選取培養(yǎng)瓶中長度1.5cm~3.0cm生長健壯的芽接種至生根培養(yǎng)基中,生根培養(yǎng)基可選用:1/2MS基本培養(yǎng)基+NAA 0.5mg/L+IBA 1.0mg/L。培養(yǎng)25d~35d,組培苗生長過程中在基部會出現(xiàn)白色嫩根,25d后平均生根數(shù)3條以上,根長約在1.0cm~4.0cm。
4.6
煉苗
4.6.1
煉苗標準
當組培幼苗基部長出3條以上長1.0cm~4.0cm的新根、苗高3~8cm,即可進行煉苗處理。
4.6.2
組培苗馴化
將裝組培苗的培養(yǎng)瓶從培養(yǎng)架上輕輕取下,迅速轉(zhuǎn)移到日光溫室中,自然散射光下煉苗,溫度控制在20℃~25℃,每天中午在培養(yǎng)瓶周圍噴灑霧水,以保濕降溫,封口煉苗1d~2d。
4.6.3
開瓶鍛煉
封口煉苗后打開瓶口,向瓶內(nèi)注入超過培養(yǎng)基表面0.5cm高的自來水,溫度控制在20℃~25℃,
2d~4d后即可移栽。
4.6.4
組培苗質(zhì)量與分級
按照株高高矮分級,分2級,即苗高≦5cm和﹥5cm。
4.7
移栽苗
用手指或鑷子輕輕取出組培苗,用清水洗去苗基部的培養(yǎng)基,移栽至裝有黑壤土、草碳土和細河沙(混合比例為2:1:1)的混合基質(zhì)的育苗盤中,育苗基質(zhì)中按每立方米基質(zhì)加入1kg磷酸二氫銨。育苗盤規(guī)格為35cm×50cm,育苗盤四壁高度不能低于7cm,育苗基質(zhì)放入育苗容器并澆透水后,厚度應不小于5cm。
4.8
移栽苗管理
育苗期保持育苗基質(zhì)見干見濕,育苗水分管理按照GB/T 6001進行。溫室空氣濕度應保持70%~80%,溫度應在18℃~25℃。
4.9
病蟲害管理
藍靛果苗期病害主要為立枯病。主要防治方法:育苗前使用0.05%炭疽福美作藥土防治,或50%多菌靈、70%甲基硫菌靈等作藥土防治,每平方米用藥8~9克;幼苗發(fā)病前期噴藥防治,選用70%土菌消(惡霉靈)可濕性粉1000倍液,或70%甲基硫菌靈可濕性粉劑800倍液,隔周噴施,共噴兩次。
蟲害主要是螞蟻。防治方法:應在育苗床周邊撒一圈百蟲靈等驅(qū)蟻藥。
生淀粉糖化酶一般指可以直接作用、水解或糖化未經(jīng)蒸煮的淀粉顆粒的酶,可能包括α-*、β*、葡萄糖*、普魯蘭酶。它可以將淀粉傳統(tǒng)工藝中的糊化、液化和糖化合并為一步直接進行糖化,如果將其應用于無蒸煮的酒精發(fā)酵,可節(jié)約總能耗的30%~40%。已發(fā)現(xiàn)的能產(chǎn)生*的微生物種類較多,報道zui多的是黑曲霉、根霉和芽孢桿菌。本文篩選出能產(chǎn)生*的細菌,對其進行初步鑒定,并進行了酶學性質(zhì)的研究。
1 材料與方法
1.1 土樣
校內(nèi)食堂垃圾附近的土壤。
1.2 培養(yǎng)基
平板分離培養(yǎng)基:可溶性淀粉3g、蛋白胨10g、NaCl 5g、瓊脂20g、蒸餾水1000ml,pH7.2~7.4,121℃滅菌20min。其中可溶性淀粉在105℃下干熱滅菌2h,然后在65℃下無菌操作加入。
液體發(fā)酵培養(yǎng)基:可溶性淀粉3g、蛋白胨10g、NaCl 5g、蒸餾水1000ml,pH7.2~7.4,121℃滅菌20min。其中可溶性淀粉在105℃下干熱滅菌2h,然后在常溫下無菌操作加入。
1.3 菌種篩選方法
初篩:變色圈法,選擇圈徑比較大的菌落,進一步劃線分離后,進行產(chǎn)酶測定。
復篩:測酶活,選擇酶活高的菌株作為目的菌株。
1.4 生*活的測定方法
酶活力測定方法:將發(fā)酵液在4℃,8000r/min下,離心30min后取出上清液,再通過抽濾得到的濾液為粗酶液,取1ml粗酶液,加入到19mLpH6.5的檸檬酸鹽緩沖液中,再加入0.5g的可溶性淀粉為底物,30℃水解2h后用0.5ml4%的NaOH溶液終止反應,反應液在4000r/min下離心5min,用DNS法測定上清液中還原糖的含量,測定540nm處的吸光度(在酶活測定體系中,以純水取代粗酶液作為空白),查葡萄糖標準曲線得到水解產(chǎn)物中的葡萄糖量,從而確定生*的酶活力大小。
酶活力定義:在pH6.5、溫度為30℃保溫120min條件下,1min產(chǎn)生1ug葡萄糖所需要的酶的量規(guī)定為1個酶活力單位(U)。
1.5 菌種鑒定
進行形態(tài)和生理生化檢測。
1.6 生淀粉糖化酶的酶學性質(zhì)研究
1.6.1 酶的熱穩(wěn)定性研究 取一定量的粗酶液,分別在50℃、60℃、70℃和80℃不同溫度下保溫60min,每隔10min測定殘留酶活力。
1.6.3 pH的影響 配制pH分別為3.0、3.6、4.0、4.6、5.0、5.6、6.0、6.6、7.0、7.6、8.0和8.6的檸檬酸鹽緩沖液,在不同pH緩沖液中讓酶水解生淀粉,通過水解產(chǎn)物中葡萄糖的量計算酶活力的大小。
1.6.4 酶的pH穩(wěn)定性研究 將酶溶于pH6.5的檸檬酸鹽緩沖液中,分別放置1、2、4、6、9、12、24、36、48和60h后,測定殘余物的酶活力大小。
1.6.5 金屬離子的影響 以不加金屬離子為對照,分別在反應液中加入1mmol/L的Ca2+、Na+、Mg2+、Fe3+、K+、Mn2+、Zn2+和Cu2+,測定酶活。
2 結(jié)果與分析
2.1 菌種篩選
從初篩平板上挑出了8株有較大淀粉水解圈的菌株,分別編號為QD001到QD008。測得它們各自的圈徑比見表1,對圈徑比較大的菌株QD001、QD006和QD007做斜面保藏并通過搖瓶復篩,得到QD006酶活力zui高,達到10、18U/ml,確定為目標菌株。
2.2 菌種鑒定
QD006的菌落較小,較薄,較透明且“細膩",邊緣光滑,革蘭氏染色確定該菌為革蘭氏陽性菌,經(jīng)顯微觀察呈球形,為球菌;糖類發(fā)酵試驗顯示改菌能利用葡萄糖,蔗糖,但不能利用乳糖:VP試驗為陰性;MR試驗為陰性;吲哚試驗為陰性;檸檬酸鹽為陰性。初步鑒定該菌為Staphylococcus intermedius。
2.3生淀粉糖化酶的酶學性質(zhì)
2.3.1 溫度對酶活的影響
由圖1可知,酶的zui適作用溫度為50℃。當溫度小于50℃時,反應速率隨溫度升高而升高,但高于zui適溫度,酶的反應速率下降。
2.3.2 生淀粉糖化酶的熱穩(wěn)定性
由圖2可知,該生淀粉糖化酶在50℃和60℃時,放置1h后,殘余酶活分別是99.8%和98.2%,由此可知,在60℃內(nèi),該生淀粉糖化酶具有很好的熱穩(wěn)定性。
2.3.3 pH對酶活力的影響
由圖3可知,該酶的zui適為6.5左右,同時可以看出pH在3-4.5的范圍內(nèi),生淀粉糖化酶的酶活變化不大,上升趨勢比較小,但pH對生淀粉糖化酶的影響呈現(xiàn)出明顯的鐘罩形。
2.3.4 酶的耐酸穩(wěn)定性
由圖4可知,該生淀粉糖化酶在pH6.5的檸檬酸鹽緩沖液中放置1、2、5h后,殘余的酶活力都在70%以上,隨著放置時間的延長,酶活力迅速降低,放置60h,殘余的酶活力僅在10%左右,所以該酶的耐酸穩(wěn)定性比較弱。
2.3.5 金屬離子對生淀粉糖化酶的酶活力的影響
由表2可知,Ca2+、Na+、K+、對該生淀粉糖化酶有激活作用,F(xiàn)e3+、Zn2+、Cu2+ 對該酶有抑制作用。
3 結(jié)論
從自然界分離得到產(chǎn)生*的菌株QD006,通過形態(tài)和生理生化鑒定,初步確定為Staphylococcus intermedius,經(jīng)對該酶酶學性質(zhì)的研究,其zui適溫度為50℃,zui適pH為6.5,并且具有良好的熱穩(wěn)定性,Ca2+、Na+、K+、對該生淀粉糖化酶有激活作用,F(xiàn)e3+、Zn2+、Cu2+ 對該酶有抑制作用。
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