操作步驟

用Tide Quencher 染料標記氨基修飾的寡核苷酸

1.準備Oligo溶液（溶液A）
將氨基修飾的oligo（~200μg）溶解在四硼酸鹽緩沖液（100μL，pH 8.5±0.5）中。
注1：寡核苷酸必須在5'末端用胺基合成。參見Appenxidx 1純化氨基修飾的寡核苷酸。
注2：避免使用含有伯胺的緩沖液，如Tris，因為它們與胺反應(yīng)性化合物競爭結(jié)合。

2.準備染料溶液（溶液B）
通過上下吸移將1mg染料SE溶解在100μLDMSO中（如果可能，> 10mg / mL）。將小瓶側(cè)面的溶液原液離心至小瓶底部。
注意：在開始綴合之前準備DMSO染料溶液。染料溶液的長期儲存可降低染料活性。任何含有染料的溶液都應(yīng)避光。我們不建議您存儲DMSO染料溶液以備將來使用。

3.運行共軛反應(yīng)
3.1向染料溶液（B，20-50μL）中攪拌或搖動（保持反應(yīng)混合物避光）加入低聚物溶液（A，100μL）。
3.2在室溫下，在旋轉(zhuǎn)器或振蕩器上旋轉(zhuǎn)或搖動反應(yīng)混合物4-6小時。
注意：在第一個小時內(nèi)每10分鐘輕輕渦旋一下小瓶，以確保反應(yīng)溶液保持充分混合。不要劇烈混合，因為材料可能留在小瓶的兩側(cè)。六小時后，應(yīng)標記50-90％的胺修飾的寡核苷酸分子。如果更方便的話，反應(yīng)可以孵育過夜。然而，在大多數(shù)情況下，過夜孵育不會導(dǎo)致更高的標記效率。

4.純化染料 - 寡糖結(jié)合物
4.1通過乙醇沉淀標記的寡核苷酸的初步純化
4.1.1將20μL（一般十分之一反應(yīng)溶液體積）的3M NaCl和300μL冷無水乙醇（通常為兩個半反應(yīng)溶液體積）加入反應(yīng)小瓶中。
4.1.2充分混合溶液并將其置于-20℃下30分鐘。
4.1.3將該溶液在微量離心機中以10,000至15,000×g離心30分鐘。
注意：如果離心時間不夠長，可能會導(dǎo)致樣品丟失。
4.1.4小心取出上清液，用冷的70％乙醇沖洗沉淀1-3次并短暫干燥。
注意：一些未反應(yīng)的標記試劑可能在反應(yīng)過程中沉淀或可能粘在反應(yīng)瓶的壁上。在離心之前，通過大量渦旋混合將該材料全部再溶解。重新溶解標記試劑可確保沉淀的寡核苷酸低限度被未反應(yīng)物污染。
4.2通過HPLC或凝膠電泳進行終純化。

使用Tide Quencher 染料標記肽

1.制備肽溶液（溶液A）
將肽（~10 mg）溶解在DMF（~1 ml）中。
注1：肽必須用堿如三乙胺或碳酸鉀中和。
注2：避免使用含有伯胺的緩沖液，如Tris，因為它們與胺反應(yīng)性化合物競爭結(jié)合。

2.準備染料溶液（溶液B）
通過上下吸移將5mg染料SE溶解在500μLDMF中（如果可能，> 10mg / mL）。
注意：在開始綴合之前準備DMF染料溶液。染料溶液的長期儲存可降低染料活性。任何含有染料的溶液都應(yīng)避光。我們不建議您存儲DMF染料溶液以備將來使用。

3.運行共軛反應(yīng)
3.1向染料溶液（B，500μL）中加入肽溶液（A，1mL），攪拌或搖動（保持反應(yīng)混合物不發(fā)光）。
3.2在室溫下攪拌反應(yīng)混合物4-6小時。

4.純化染料 - 肽綴合物
濃縮反應(yīng)溶液并在C18柱上純化，得到所需的綴合物。通過HPLC分析級分，合并> 97％純度的級分并凍干。
注1：HPLC純化條件：TEAB緩沖液（三乙基碳酸氫銨，0.25mmol，pH = 7.0-8.0）用作緩沖液A，乙腈用作緩沖液B. HPLC在60分鐘內(nèi)從0％B至30％B進行（流速：100毫升/分鐘）。
注2：操作過程中避免強光。