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1、 諾沃克病毒GI型熒光RT-PCR檢測試劑盒簡介 
貨號：HB-914-1 
為了適應貝類諾沃克病毒快速檢測和疫病研究的需要，本公司根據(jù) 2005 年國家質(zhì)量監(jiān)督管理總
局發(fā)布的出入境檢驗檢疫行業(yè)標準(SN/T 1635-2005)中的的引物和探針序列，經(jīng)多次實驗及系
統(tǒng)優(yōu)化，開發(fā)了本試劑盒。應用本試劑盒進行檢測具有快速、靈敏、特異、準確、安全操作簡
單、應用廣泛和高通量檢測等特點及優(yōu)點。
2、 試劑盒組成 
試劑盒組成包括核酸擴增試劑。具體組成參見表 1：
表 1：試劑盒組成（50test/盒）
試劑盒組成成分 體積 
核酸提取試劑： 核酸裂解液 15ml×2 管
核酸擴增試劑： DEPC 水
諾沃克 GI 型熒光 RT-PCR 反應液
酶混合物
陰性對照
諾沃克 GI 型 陽性對照
1ml×1 管
750µL×1 管
60µL×1 管
1ml×1 管
1ml×1 管
（注：核酸提取試劑可使用本公司的提取核酸更快捷方便的《病毒 RNA 柱式提取試劑盒》） 
3、 樣本采集,存放及運輸 
3.1 樣本采集：所用取樣器材必須經(jīng)高壓滅菌并烘干。
取貝類中腸腺組織約 5 g，加入 35 mL 的緩沖液高速勻漿，37℃孵育 30 min，4℃ 10,000g
離心 30 min。取上清，加入等體積 PEG8000，反復顛倒混勻，冰上放置 1 h，4℃ 10,000g 離心 5 min，
棄上清。保留沉淀備用。
3.2 存放：樣本在 2 ℃—8 ℃條件下保存應不超過 24 h；-70 ℃以下可保存，但應避免反復凍
融（zui多凍融 3 次）。
3.3 運輸：采用泡沫箱加冰密封進行運輸。
4、 熒光 RT-PCR 檢測 
4.1 操作方法 
4.1.1 樣本的處理（在樣本制備區(qū)進行）：
4.1.1.1 取 n 個滅菌的 1.5 mL Eppendorf 管，其中 n 為被檢樣品與陰性對照的和（陽性對照、陰性
對照在試劑盒中已標出），做標記。(注：試劑盒中的陽性對照直接作為 PCR 檢測的模板，無需提取核酸)
4.1.1.2 每管加入 600 µL 裂解液，分別加入被檢樣本和陰性對照各 200 µL，一份樣本換用一個吸
頭，混勻器上振蕩混勻 5 s（不能過于強烈，以免產(chǎn)生乳化層，也可以用
手顛倒混勻），于 4℃ 12 000 r/min 離心 15 min。
4.1.1.3 取與 4.1.1.1 相同數(shù)量滅菌的 1.5 mL Eppendorf 管，加入 500 µL 異丙醇（-20℃預冷），
做標記。吸取 4.1.1.2 各管中的上清液轉(zhuǎn)移至相應的管中，上清液應至少吸取 500µL，不能吸
出中間層，顛倒混勻。
4.1.1.4 于 4 ℃、12 000 r/min 離心 15 min（Eppendorf 管開口保持朝離心機轉(zhuǎn)軸方向放置），小
心倒去上清，倒置于吸水紙上，沾干液體(不同樣品須在吸水紙不同地方沾干)；加入 600 µL 75％
乙醇，顛倒洗滌。
4.1.1.5 于 4 ℃、12 000 r/min 離心 10 min（Eppendorf 管開口保持朝離心機轉(zhuǎn)軸方向放置），小
心倒去上清，倒置于吸水紙上，盡量沾干液體（不同樣品須在吸水紙不同地方沾干）。
4.1.1.6 4 000 r/min 離心 10s（Eppendorf 管開口保持朝離心機轉(zhuǎn)軸方向放置），將管壁上的殘余
液體甩到管底部，小心倒去上清，用微量加樣器將其吸干，一份樣本換用一個吸頭，吸頭不要
碰到有沉淀一面，室溫干燥 3 min，不能過于干燥，以免 RNA 不溶。
4.1.1.7 加入 11 µL DEPC 水，輕輕混勻，溶解管壁上的 RNA，2 000 r/min 離心 5 s，冰上保存?zhèn)?br />用。提取的 RNA 須在 2 h 內(nèi)進行 PCR 擴增；若需保存須放置-70 ℃冰箱內(nèi)。
【也可參照《病毒 RNA 柱式提取試劑盒說明書》（貨號：HB-QPCR-01）使用，更方便快捷提取
核酸】。
注：諾沃克病毒GI型熒光RT-PCR檢測試劑盒提取的 RNA 須在 2 h 內(nèi)進行 PCR 擴增；若需保存須放置-70 ℃冰箱內(nèi)。 
4.1.2 檢測
4.1.2.1 擴增試劑準備（在反應混合物配制區(qū)進行）：
從試劑盒中取出相應的熒光 RT-PCR 反應液、酶混合物，在室溫下融化后，2000 r/min 離心 5 s。
設(shè)所需熒光 RT-PCR 檢測總數(shù)為 n，其中 n 為被檢樣品、陽性對照與陰性對照的和，每個樣品測試反
應體系配制見表 2：
表 2 每個樣品測試反應體系配制表
試劑 RT-PCR 反應液 酶混合物
用量 15 μL 1.0 μL
根據(jù)測試樣品的數(shù)量計算好各試劑的使用量，加入到適當體積試管中，充分混合均勻，向每個
熒光RT-PCR管中各分裝16 µL，轉(zhuǎn)移至樣本處理區(qū)。
4.1.2.2 加樣（樣本處理區(qū)進行）：
在各設(shè)定的熒光RT-PCR管中分別加入上述樣本處理步驟4.1.1.7中制備的RNA溶液各10 µL，蓋緊
管蓋，500 r/min離心30 s。
4.1.2.3 熒光 RT-PCR 檢測（在檢測區(qū)進行）：
將4.1.2.2中離心后的PCR管放入熒光RT-PCR檢測儀內(nèi)，記錄樣本擺放順序。
循環(huán)條件設(shè)置：
*階段，反轉(zhuǎn)錄48oC /45 min，50 oC /2 min
第二階段，預變性95 oC/10 min；
第三階段，95 oC/15s，60 oC/60s，40個循環(huán)，在第三階段每次循環(huán)的60 oC退火延伸時收集熒光。
試驗檢測結(jié)束后，根據(jù)收集的熒光曲線和Ct值判定結(jié)果。
4.2 結(jié)果判定 
4.2.1 結(jié)果分析條件設(shè)定
直接讀取檢測結(jié)果。閾值設(shè)定原則根據(jù)儀器噪聲情況進行調(diào)整，以閾值線剛好超過正常陰性樣
品擴增曲線的zui高點為準。
4.2.2 質(zhì)控標準
4.2.2.1 陰性對照無 Ct 值或無擴增曲線。
4.2.2.2 陽性對照的 Ct 值應<25.0，并出現(xiàn)典型的擴增曲線。否則，此次實驗視為無效。
4.2.3 結(jié)果描述及判定
4.2.3.1 陰性
無Ct值或無擴增曲線，示樣品中無諾沃克病毒GI型核酸。
4.2.3.2 陽性
Ct值≤30，且出現(xiàn)典型的擴增曲線，示樣品中存在諾沃克病毒GI型核酸。
4.2.3.3 有效原則
Ct值>30的樣本建議重做。重做結(jié)果無數(shù)值者為陰性，否則為陽性。
5、 諾沃克病毒GI型熒光RT-PCR檢測試劑盒相關(guān)技術(shù)信息（引物和探針序列） 
F：CGCTGGATGCGATTCCATGA
R：CTTAGACGCCATCATCATTYAC
Probe1：FAM- AGATYGCGATCYCCTGTCCA-TAMRA
Probe2：FAM- AGATCGCGGTCTCCTGTCCA-TAMRA